免疫组化的优缺点
免疫组化的优点在于其高特异性和敏感性,能够在组织原位检测目标蛋白的表达和分布。此外,免疫组化可以与其他技术(如荧光显微镜、电子显微镜)结合,提供更丰富的信息。然而,免疫组化也存在一些缺点。首先,实验步骤复杂,需要优化多个参数(如一抗浓度、孵育时间)。其次,免疫组化的结果可能受到组织固定、抗原修复等因素的影响,导致假阳性或假阴性结果。此外,免疫组化的定量分析相对困难,通常只能进行半定量分析。 哪里可以做免疫组化?河南动物组织免疫组化检测
免疫组化染色呈阴性结果的原因有哪些?
1、抗体浓度和质量问题以及抗体来源选择错误。不是抗体浓度越高就越易出现阳性结果,抗原抗体反应有前带和后带效应,必须摸索比较好浓度。
2、抗原修复不全,对于甲醛固定的组织必须用充分抗原修复来打开抗原表位,以利于与抗体结合;建议微波修复用高火4次*6min试试。有人做过实验,这是比较好的时间和次数。若不行,还可高压修复。
3、组织切片本身这种抗原含量低。
4、血清封闭时间过长。
5、DAB孵育时间过短。
6、细胞通透不全,抗体未能充分进入胞内参与反应。
7、开始做免疫组化,建议一定要首先做个阳性对照片,排除抗体等问题。 河南动物组织免疫组化检测英瀚斯生物,组织包埋、切片、染色、免疫组化拍照、报告分析,一站式搞定!
免疫组化的实验步骤
免疫组化的实验步骤通常包括组织固定、切片、抗原修复、封闭、一抗孵育、二抗孵育、显色和复染等。首先,组织样本需要经过固定(如福尔马林固定)以保持其形态结构。然后,将固定后的组织包埋在石蜡中并切成薄片。抗原修复是为了暴露被固定过程掩盖的抗原表位,常用的方法有热修复和酶消化。封闭步骤是为了减少非特异性结合,通常使用血清或BSA。一抗孵育是关键步骤,一抗与目标蛋白特异性结合。二抗孵育则是通过二抗与一抗结合,并连接显色系统。,通过显色和复染使目标蛋白可视化。
免疫组化有哪几种分类 ?
1)按标记物质的种类,如荧光染料、放射性同位素、酶(主要有辣根过氧化物酶和碱性磷酸酶)、铁蛋白、胶体金等,可分为免疫荧光法、放射免疫法、免疫酶标法和免疫金银法等。
2)按染色步骤可分为直接法(又称一步法)和间接法(二步、三步或多步法)。与直接法相比,间接法的灵敏度提高了许多。
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3)按结合方式可分为抗原-抗体结合,如过氧化物酶-抗过氧化物酶(***)法;亲和连接,如卵白素-生物素-过氧化物酶复合物(ABC)法、链霉菌抗生物素蛋白-过氧化物酶连结(SP)法等,其中SP法是比较常用的方法;聚合物链接,如即用型二步法,此方法尤其适合于内源性生物素含量高的组织抗原检测。 做好免疫组化,你需要了解这些!
做免疫组化时如何选择一抗?
1、单克隆和多克隆抗体的选择。由一种克隆产生的特异性抗体叫做单克隆抗体。单克隆抗体能目标明确地与单一的特异抗原决定簇结合,就像导弹精确地命中目标一样。另一方面,即使是同一个抗原决定簇,在机体内也可以由好几种克隆来产生抗体,形成好几种单克隆抗体混杂物,称为多克隆抗体。在抗原抗体反应中,一般单克隆抗体特异性强,但亲和力相对小,检测抗原灵敏度相对就低;而多克隆抗体特异性稍弱,但抗体的亲和力强,灵敏度高,但易出现非特异性染色(可以通过封闭等避免)。
2、应用范围的选择。有的一抗只能用于Westernblotting,或免疫组化、免疫荧光、免疫沉淀等;甚至标明石蜡切片或冰冻切片。
3、种属反应性的选择(speciesreactivity)。这一点很重要,表明这种抗体可能存在种属差别,且这种抗体适合检测哪种种属动物体内的抗原。
4、种属来源,一般兔来源的多是多克隆抗体;而小鼠来源的多是单克隆抗体,但也有另外。根据此来源来选择相应的二抗。
5、生产厂家的选择。
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免疫组化的结果分析:
免疫组化实验通常需要设置阳性对照、阴性对照(或替代对照)(阳性对照是排除方法和实验系统有无问题;阴性对照与替代对照是排除有无非特异性染色)。一般情况下,阳性对照颜色的特点为:Ag定位,包浆、胞核、胞膜、间质具有结构性。且染色的强度不同(颜色深浅不一);阴性对照的特点为:染色细胞与组织无区别,颜色具有弥散性,分布均匀。
英瀚斯生物可承接各类病理染色,包括免疫组化。
说明:免疫组化实验可以对结果进行定量分析,但要实验得到的必须是高质量的染色切片,要求背景染色浅且特异性染色较深,这样分析的结果才会比较准确。 河南动物组织免疫组化检测