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疾病动物模型建模基本参数
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疾病动物模型建模企业商机

呼吸系统H01代码下分为18个小类,笔者浏览近五年面上项目,大致筛选出各个代码下常见的研究方向或疾病(毕竟只是人工筛选,准确性欠佳,敬请谅解)。接下来为大家介绍研究较多的几个疾病的常见造模方法,分别为、COPD、急性肺损伤、肺纤维化、肺动脉高压。动物模型实验动物:小鼠、大鼠、豚鼠造模试剂:卵清蛋白(OVA)、HDM(尘螨)获得方式:一般自己构建。在造模过程先采用抗原致敏(腹腔注射OVA和氢氧化铝混合物或者鼻内滴入HDM)使动物机体内存在致敏物,然后气道局部激发(反复雾化或者滴鼻激发),诱导。上海东寰可以做疾病动物模型建模。徐州疾病动物模型建模说明书

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麻醉小鼠,仰卧固定于实验台上,颈部去毛后酒精消毒,切开皮肤,逐层暴露气管,将1mL注射器经两气管软骨环间隙朝向心端刺入气管,回抽无阻力,则注入博莱霉素5mg/kg/L(对照组注入等量的生理盐水)。手术完毕后迅速将动物直立、旋转,使药液在肺内分布均匀,动物清醒后常规饲养。4.2模型鉴定及后续检测:肺纤维化模型发展时间:给药后第7天肺组织大多呈重度肺泡炎改变,肺泡腔及肺间质内有大量中性粒细胞浸润,部分肺泡腔破坏或消失,肺间隔内成纤维细胞和增生,与正常肺组织对比差别明显;给药后第14天,肺纤维化开始形成。巨噬细胞、中性粒细胞等炎性细胞明显减少,成纤维细胞增多,肺泡间隔明显增厚,有胶原沉积。给药后第28天,多数小鼠发生弥漫性肺间质纤维化,肺间质被胶原纤维和成纤维细胞替代,肺泡壁破坏,肺大泡形成,但仍可见炎性细胞浸润。徐州疾病动物模型建模说明书小鼠是人类疾病理想的动物模型不仅因为小鼠在生理上与人类极为相似而且小鼠的遗传资源非常丰富。

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动物模型名称:固定制动致制动应激大鼠模型2、实验动物种属:SD大鼠3、实验动物性别:雄性4、实验动物年龄:成年5、实验动物体重:180~220g6、实验动物环境:SPF级。1、实验方法:采用固定制动方法。大鼠每天固定5~6小时进行制动应激,连续制动40天。2、检测标准:模型组大鼠体重增长速度较正常对照缓慢;旷场试验的结果显示,造模结束时与正常对照组比较,模型组大鼠的水平穿越格数、垂直运动次数、理毛时间均减少,**格停留时间、粪便粒数均增加;ELISA的结果显示,造模结束时与正常对照组比较,模型组大鼠CRH、ACTH、CORT含量均明显增高。

葡聚糖硫酸钠(DSS)致溃疡性结肠炎小鼠模型:1、动物模型名称:葡聚糖硫酸钠(DSS)致溃疡性结肠炎小鼠模型2、实验动物种属:BALB/c小鼠3、实验动物性别:雄性4、实验动物年龄:成年鼠5、实验动物体重:18g-22g6、实验动物环境:SPF级1、实验方法:实验前小鼠禁食不禁水24h,24小时后提起鼠尾将其悬空,使挣扎以排出大肠远端的大便。小鼠自由饮用5%葡聚糖硫酸钠(DSS)溶液,连续14天。进行疾病活动指数(DAI)的评估、取结肠进行组织病理学检查。2、检测标准:DAI评分明显升高,与对照组比较具统计学意义。结肠病理镜检可见结肠炎症、病变深度、隐窝破坏、溃疡病变.小鼠疾病模型有助于遗传性疾病致病基因的发现与验证。

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2mg组、4mg组、6mg组lh水平均上升,同样,只有2mg组有明显升高(p<),如图3所示。表3表4②体重变化:(mean±sd),如图4所示:2mg组(连续注射7天)与空白组相比,大鼠体重***下降(p<,注射第2天开始)。3mg组(连续注射7天)与空白组相比,大鼠体重***下降(p<,注射第4天开始),直至第12天*存活1只大鼠。4mg、6mg组(第1、8天注射)与空白组相比,大鼠体重分别在***次及第二次注射后的有***下降(p<),4mg组体重在停止给药后4天与空白组无差异。③卵巢重量:如表5、图5所示,2mg、6mg组大鼠在经过顺铂注射后卵巢重量相比对照组,都有不同程度缩减,其中2mg组卵巢重量明显减轻(p<),4mg、6mg组无明显差异。表5④动情周期观察(阴道涂片):3mg组动物死亡时间早,无完整的动情周期。如表、图6所示。正常大鼠动情周期4-5天。分为四个阶段,动情前期:撇圆形有核上皮细胞占绝大多数,白细胞和角化上皮细胞很少(图a)。动情期:角化上皮细胞占多大多数,由散在增至集白细胞和有核上皮细胞很少(图b)。动情后期:片状角化上皮细胞,有核上皮细胞和白细胞3种都有,无太大差异(图c)。动情间期:白细胞占绝大多数,有核上皮细胞和角化上皮细胞很少(图d)。表6⑤病理结果:如图7所示上海东寰为您提供完善的大鼠动物疾病模型。徐州疾病动物模型建模说明书

明确研究疾病的独特资源确定小鼠疾病模型的初步选择。徐州疾病动物模型建模说明书

配制成6mg/kg顺铂注射液,按照10ml/kg分别在***天及第八天腹腔注射。实验建立大鼠卵巢早衰模型1.实验仪器及材料:如表1所示。表12.实验方法:①动物信息:sd大鼠,雌性,6-8周,体重180-220g。普通环境饲养,灭菌饲料饲养,自由饮水。②分组及给药剂量:如表2所示。表2③给药途径及频率:腹腔注射;2mg、3mg组连续注射7天;4mg、6mg组***天、第八天注射;对照组连续7天注射生理盐水。④病理检测:末次注射后15天,动物麻醉,采集血液,分离血清,elisa法测定血清中e2、fsh、lh水平变化情况。解剖动物,取卵巢组织称重,对大鼠的卵巢组织形态学进行观察。注射期间每天称重,给药后每周称重两次,每天进行阴道涂片检测动情周期。3.统计方法:采用graphpad进行统计分析。所有计量资料均采用均值±标准差表示采用单因素方差分析各组间均值的差异,p<。4.试验结果:(3mg组注射完成后*存活一只,不进行统计)如表3、表4、图1、图2、图3所示:①***水平:与空白组相比,2mg组、4mg组、6mg组e2水平均降低,但是只有2mg组有明显降低(p<),如图1所示;与空白组相比,2mg组、4mg组、6mg组fsh水平均上升,只有2mg组有明显升高(p<),如图2所示;与空白组相比。徐州疾病动物模型建模说明书

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